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  一、實(shí)驗(yàn)簡(jiǎn)介

  細(xì)胞轉(zhuǎn)染是指將外源分子如DNA、RNA等導(dǎo)入真核細(xì)胞的技術(shù)。主要包括:電穿孔法、顯微注射、基因槍、磷酸鈣共沉淀法、脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法、病毒介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染等,理想的轉(zhuǎn)染方法是具有高轉(zhuǎn)染效率、對(duì)細(xì)胞毒性作用小等。其中脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染是常用的簡(jiǎn)便轉(zhuǎn)染方法。

  脂質(zhì)體(liposome)轉(zhuǎn)染方法的原理在于,陽離子脂質(zhì)體表面帶正電荷,能與核酸的磷酸根通過靜電作用將DNA分子包裹,形成DNA-脂復(fù)合體,被表面帶負(fù)電荷的細(xì)胞膜吸附。再通過膜的融合或細(xì)胞的內(nèi)吞作用,偶爾通過直接滲透作用,將DNA轉(zhuǎn)運(yùn)至細(xì)胞內(nèi),形成包涵體或進(jìn)入溶酶體。當(dāng)DNA從包涵體內(nèi)釋放后,進(jìn)入細(xì)胞質(zhì),再進(jìn)一步進(jìn)入核內(nèi)實(shí)現(xiàn)轉(zhuǎn)錄、表達(dá)。

  二、siRNA/shRNA/miRNA/DNA轉(zhuǎn)染細(xì)胞實(shí)驗(yàn)步驟(以6孔板為例)

  1 轉(zhuǎn)染前一天接種細(xì)胞于6孔板,5×104每孔,第二天轉(zhuǎn)染時(shí)細(xì)胞匯合度達(dá)到60%-70%每孔。

  2 轉(zhuǎn)染前半小時(shí)將完全培養(yǎng)基換無血清培養(yǎng)基1.9 ml。

  3 A液:RNA100pmol/DNA 2μg(根據(jù)核酸類型不同,用量不同)加入50 ul Opti-MEM無血清培養(yǎng)基,輕輕混勻,室溫靜置5min。

  4 B液:脂質(zhì)體使用前輕輕混勻,脂質(zhì)體5ul 加入50 ul Opti-MEM無血清培養(yǎng)基,輕輕混勻,室溫靜置5min。

  5 B液加入到A液中,用槍輕輕混勻,室溫靜止20min。

  6 將混合液均勻分散慢慢滴加到6孔板細(xì)胞中,邊滴加邊前后左右十字交叉輕輕搖晃。

  7 孵箱37℃培養(yǎng)4~6h,然后將無血清培養(yǎng)基換成完全培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。

  8 mRNA 水平的檢測(cè):在轉(zhuǎn)染后24-48h后,用Real-time PCR的方法在mRNA水平進(jìn)行檢測(cè)。

  9 蛋白水平的檢測(cè):在轉(zhuǎn)染后48-72h后,用Western-blot或免疫組化的方法在蛋白水平進(jìn)行檢測(cè)。

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